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分子生物學(xué)試劑
PCR相關(guān)
T02122xTaq PCR Forest Mix 綠色(含染料)
product
產(chǎn)品分類(lèi)品牌 | LABLEAD | 貨號(hào) | T1212 |
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規(guī)格 | 1ml | 供貨周期 | 一周 |
2xTaq PCR Forest Mix 綠色(含染料)
產(chǎn)品貨號(hào):T0212
存儲(chǔ)條件:-20℃
產(chǎn)品說(shuō)明
2xTaq PCR Forest Mix 綠色(含染料)的濃度為 2x,使用方便快捷,能減少 PCR操作過(guò)程中的污染,使用時(shí)只需取適量2xTaq PCR Forest Mix綠色),加入模板和引物,并加入ddH2O 補(bǔ)足體積,使反應(yīng)體系濃度為 1x,即可進(jìn)行 PCR 反應(yīng)。PCR 產(chǎn)物 3'端帶突出A堿基,純化后可直接用于 T/A 克隆。
本產(chǎn)品能夠高效擴(kuò)增≤5 kb 的 DNA 片段,擴(kuò)增產(chǎn)量高PCR Mix中包含兩種染料,PCR產(chǎn)物無(wú)需添加Loading Buffer可直接點(diǎn)樣電泳,且電泳過(guò)程中會(huì)出現(xiàn)兩個(gè)指示條帶。該染料不影響PCR擴(kuò)增效率,但對(duì)于需要對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行吸光度、熒光等光學(xué)分析的實(shí)驗(yàn),建議在分析前對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行純化,或使用無(wú)染料的PCR Master Mix。
質(zhì)量控制
核酸內(nèi)切酶活性檢測(cè)
將25 μl 2xTaq PCR Forest Mix與 200 ng 超螺旋質(zhì)粒 DNA 配制成 50 μl 反應(yīng)體系,在37°C下,共同溫育4h后,使用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),少于 10% 的質(zhì)粒 DNA 轉(zhuǎn)變成缺刻或線性狀態(tài)。
非特異性核酸酶活性檢測(cè)
將25 μl 2xTaq PCR Forest Mix與 15 ng 雙鏈 DNA 片段配制成 50 μl反應(yīng)體系,在 37℃下溫育 16 h,使用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)雙鏈 DNA 底物無(wú)變化。
使用方法
1.常規(guī) PCR 反應(yīng)體系 ( 冰上操作 )
試劑 | 使用量 | 終濃度 |
2xTaq PCR Forest Mixa | 25 ul | 1x |
正向引物(10uM)b | 1~2 ul | 0.2~0.4uM |
反向引物(10uM)b | 1~2 ul | 0.2~0.4uM |
模板DNAc | X ul | |
ddH2O | Up to 50 ul |
a. 需融解完quan后使用,防止離子濃度不均勻;
b. 引物推薦終濃度為0.2~0.4 μM,效果不佳時(shí)可以在 0.1~1 μM 濃度范圍內(nèi)進(jìn)行調(diào)整;
c. 不同模板最佳反應(yīng)濃度有所不同,以 50 μl 體系為例:模板為基因組 DNA 時(shí)一般推薦的使用量為 10~400 ng;當(dāng)模板為質(zhì)粒或病毒 DNA 時(shí),一般推薦的使用量為 10 pg~20 ng。
2. 三步法 PCR 反應(yīng)程序
步驟 | 溫度 | 時(shí)間 | 循環(huán) |
預(yù)變性d | 95℃ | 3~5 min | |
變性 | 95℃ | 30 s | 30-35cycles |
退火e | 55~65℃ | 30 s | |
延伸f | 72℃ | 30~60 s/kb | |
終延伸 | 72℃ | 5 min |
d. 菌落 PCR 時(shí)預(yù)變性 10 min,可充分破壁細(xì)胞,大腸桿菌或酵母菌均可高效擴(kuò)增。
e. 退火溫度請(qǐng)根據(jù)引物 Tm 值設(shè)置。如果需要,推薦通過(guò)建立溫度梯度尋找引物與模板結(jié)合的最適溫度。此外,退火溫度直接決定擴(kuò)增特異性,如發(fā)現(xiàn)擴(kuò)增特異性差,可適當(dāng)提高退火溫度。
f. 目的片段長(zhǎng)度< 3 kb,延伸時(shí)間可縮短至 30 s/kb;目的片段長(zhǎng)度>3 kb,延伸時(shí)間建議 60 s/kb。
010-60608020